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蔗糖磷酸化酶(SP)测试盒(比色法)

试剂别名:
CAS NO.:
分 子 式:
分 子 量:

蔗糖磷酸化酶(Sucrose Phosphorylase, SP)试剂盒说明书

                                                     微量法100T/96S

注意:正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

测定意义:

SP(EC2.4.1.7)主要存在于微生物和植物中,裂解葡萄糖苷键,催化葡萄糖基转移到果糖、木糖、半乳糖和鼠李糖等,合成相应的葡萄糖基低聚糖。此外,SP还能催化氢醌合成熊果苷,具有极强的美白效果,在化妆品工业中具有重要应用。

测定原理:

SP能够以磷酸为受体,催化蔗糖产生1-磷酸葡萄糖,在葡萄糖磷酸变位酶催化下变位为6-磷酸葡萄糖,在6-磷酸葡萄糖脱氢酶作用下还原NADP+生成NADPH,导致340nm光吸收值增加。测定340nm吸光度增加速率,即可计算SP活性。

自备实验用品及仪器:

天平、低温离心机、恒温水浴锅、酶标仪、96孔板和蒸馏水。

试剂组成和配制:

提取液:液体100mL×1瓶,4℃保存。

试剂一:液体15mL×1瓶,4℃保存。

试剂二:粉剂×1支,-20℃避光保存,临用前加2.5mL蒸馏水溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

试剂三:粉剂×1支,-20℃避光保存,临用前加5mL蒸馏水溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

粗酶液提取:

  1. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液)进行冰浴匀浆,然后10000g,4℃,离心10min,取上清待测。
  2. 细菌、真菌:按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后10000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。

测定操作表:

1.酶标仪预热30min,调节波长至340nm。

2.操作表

试剂名称

对照管

测定管

试剂一(μL)

120

120

试剂二(μL)

20

20

试剂三(μL)

40

40

样本(μL)

 

20

蒸馏水(μL)

20

 

迅速混匀,于96孔板,37℃下测定340nm的初始吸光值与反应2min后的吸光值,测定管记作A1与A2,对照管记作A3与A4,△A=(A2- A1)-(A4- A3)。

SP活性计算公式:

1. 按照蛋白浓度计算

酶活定义:37℃,pH6.8时,每毫克蛋白质每分钟催化产生1nmol NADPH为一个酶活单位。

SP活性(nmol/min/mg prot)=×V反总÷V样÷Cpr÷T=1608×△A÷Cpr

按照样本质量计算

酶活定义:37℃,pH6.8时,每克样本每分钟催化产生1nmol NADPH为一个酶活单位。

SP活性(nmol/min/g 鲜重)=×V反总÷(V样÷V样总×W)÷T=1608×△A÷W

3. 按照细胞数量计算

酶活定义:37℃,pH6.8时,每104个细胞每分钟催化产生1nmol NADPH为一个酶活单位。

SP活性(nmol/min/104 cell)=×V反总÷(V样÷V样总×细胞数量(万个))÷T=1608×△A÷细胞数量(万个)

:NADPH摩尔消光系数,6220 L/mol/cm;d:比色皿光径,0.5cm;V反总:反应体系总体积,0.2mL;V样:反应体系中样本体积,0.02mL;W:样本质量,g;Cpr:蛋白浓度,mg/mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,2min

注意事项:

可选用BCA法测定蛋白含量试剂盒测定蛋白含量。

样本较多时,可以按照每个样本试剂一:试剂二:试剂三=120:20:40(μL)的比例配制工作液,用多少配多少,临用前立刻配制,10分钟内使用。

 

 

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